红细胞冷凝集对血细胞分析检验的影响及处理方法

孙建伟

辽宁省抚顺矿务局总医院检验科,辽宁抚顺 113008

[摘要] 目的 探讨红细胞冷凝集对血液分析仪检测的影响和处理方法。方法 对20例红细胞冷凝集标本在3种不同条件下使用全自动血细胞分析仪XE-5000进行检测:①普通室温(20 ℃); ②37 ℃水浴30 min后; ③25 ℃条件下,37 ℃水浴30 min后。测定3种不同条件下红细胞﹑血红蛋白﹑红细胞各项参数﹑白细胞﹑血小板的值。 结果 20 ℃条件下,20例标本红细胞、白细胞和血小板均有异常报警;37 ℃水浴30 min后,其中15例标本无异常报警,5例标本红细胞、白细胞和血小板均有异常报警;25 ℃条件下37 ℃水浴30 min,20例标本均无异常报警。3种条件下检测结果中,血红蛋白(HGB)、白细胞(WBC)和血小板(PLT)差异无统计学意义(P>0.05);红细胞(RBC)、 红细胞压积(HCT)、红细胞平均红细胞体积(MCV)、红细胞平均血红蛋白含量(MCH)和红细胞平均血红蛋白浓度(MCHC)差异有统计学意义(P<0.05)。 结论 红细胞冷凝集对WBC、HGB和PLT检测结果基本无影响。对RBC、HCT、MCV、MCH和MCHC检测结果有影响,在日常工作中,应引起重视,并对红细胞冷凝集标本进行科学处理。

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关键词 冷凝集;血细胞分析仪;冷凝集素

[中图分类号] R457 [文献标识码] A [文章编号] 1674-0742(2014)09(b)-0189-02

[作者简介] 孙建伟(1973.10-),女,辽宁抚顺人,本科,主管检验师,研究方向:临床检验诊断学。

血细胞分析仪是临床实验室检查常用的检验仪器之一,血细胞分析结果的质量直接关系到对病人的诊断和分析,但在血常规的日常检测中经常会遇到很多影响因素,例如:血小板假性减少症,红细胞凝集(冷凝集),脂血/溶血,有核红细胞,白细胞增多,疟疾,采样、抗凝不当等。因此,在血常规的检测过程中做好质量控制是至关重要的。在血细胞分析中我们发现有些患者的红细胞极容易发生凝集,使RBC、 HCT假性降低,MCV、MCH、MCHC假性升高。造成血常规的检验结果不正常,对临床做出错误的引导。为了及时发现和准确排除红细胞冷凝集对血细胞分析仪的影响,该实验选择了从2013年1月—2014年5月共20例红细胞冷凝集的标本在3种不同条件下检测:①普通室温(20 ℃);②37 ℃水浴30 min后立即检测;③25 ℃条件下37 ℃水浴30 min后立即检测,现报道如下。

1 资料与方法

1.1 一般资料

1.1.1 仪器与试剂 日本Sysmex公司生产的XE-5000全自动血液分析仪及配套原装试剂、日本奥林巴斯光学株式会社生产的双筒显微镜。原厂配套正常浓度和高浓度质控品。

1.1.2 标本 从2013年1月—2014年5月抚顺矿务局医院住院患者血常规标本中,通过镜检筛选出20例红细胞冷凝集标本。所有标本均按常规全血细胞检测,血细胞分析仪每半年校准一次。每日测定正常浓度和高浓度2个浓度的质控品,结果均在控。标本通过静脉采血2 mL,加入EDTA-K2抗凝的真空管内,轻轻地颠倒混匀。于采集后4 h内,在XE-5000全自动血液分析仪检测完毕。其中男性12人,女性8人。其中包括肺炎支原体10例,传染性单核细胞增多症3例,多发性骨髓瘤2例,肺癌1例,白血病 2例,恶性淋巴瘤2例。

1.2 方法

将20例红细胞冷凝集的标本采用不同的方法处理后,在日本Sysmex公司生产的XE-5000全自动血液分析仪检测。血液分析仪所使用的试剂为原厂配套。显微镜为日本奥林巴斯光学株式会社生产。瑞士吉姆萨染液由贝索生物技术公司提供。①普通室温(20 ℃); ②37 ℃水浴30 min;③25 ℃条件下,37 ℃水浴30 min。记录3种不同条件下红细胞﹑红细胞压积、血红蛋白﹑红细胞各项参数﹑白细胞﹑血小板的值。该仪器以半导体激光器流式细胞技术结合荧光染色技术检测白细胞,电阻抗法测定红细胞和血小板,比色法测定血红蛋白。以上3种方法检测的同时观察管壁红细胞聚集的情况,检测各推两张血涂片,瑞士吉姆萨染色,双筒显微镜镜检。

1.3 统计方法

使用SPSS17.0软件对数据进行处理分析,计量资料以均数±标准差(x±s)表示,采用t检验。

2 结果

红细胞冷凝集的标本在3种不同的环境下检测时可发现:普通室温时,红细胞、白细胞、血小板均有异常报警(Agglut和Turb/Hb)。红细胞直方图可见异常的大红细胞峰。管壁上有细砂粒样凝集颗粒;血涂片发现血膜上有许多细小颗粒,显微镜下可见红细胞大量聚集在一起。

37 ℃水浴30 min后, 15例标本未发现抗凝管管壁有凝集颗粒,试管壁上的小片状凝块消失,红细胞分布图形正常,无报警信息。镜检血涂片,可见红细胞均匀分布。其余5例标本仍然提示红细胞、白细胞、血小板有异常报警(Agglut和Turb/Hb),红细胞直方图异常。

室温25 ℃时,标本37 ℃水浴30 min后,20例标本均未出现报警信息。管壁无凝集颗粒,镜检血涂片,可见红细胞均匀分布。

从表1可以看出,①普通室温(20 ℃)和37 ℃水浴30 min 的结果比较,WBC、HGB、PLT差异无统计学意义(P>0.05)。而红细胞、红细胞压积(HCT)、平均红细胞体积(MCV)、平均红细胞血红蛋白含量(MCH)、平均红细胞血红蛋白浓度(MCHC)的差异有统计学意义(P<0.05);②37℃水浴30 min和25 ℃条件下37 ℃水浴30 min的结果比较,WBC、HGB、PLT差异无统计学意义(P>0.05)。而红细胞、红细胞压积(HCT)、平均红细胞体积(MCV)、平均红细胞血红蛋白含量(MCH)、平均红细胞血红蛋白浓度(MCHC)的差异有统计学意义(P<0.05)。

3 讨论

冷凝集素是冷反应型抗红细胞抗体,在受冷后可使红细胞出现聚集[1]。在0~4 ℃时最易和红细胞膜抗原结合,是较强的使红细胞凝集的一种自身免疫性抗体,可存在于正常人的血清中,抗体多数是IgM型。低效价的冷凝集素一般无临床意义,通常16 ℃以下可使红细胞发生凝集,30 ℃以上不发生凝集[2]。这种自身凝集反应是可逆的,当环境温度升高后,凝集的红细胞可自行解聚[3]。正常人血液中都有一定量的冷凝素抗体,但滴度较低,在1∶16以下。正常情况下,不会导致不良反应。但当机体处于感染等病理情况时,机体的冷凝素的含量增加,可以引起凝集反应[4]。很多疾病如多发性骨髓瘤、巨球蛋白血症、淋巴系统增殖性疾病、自身免疫性疾病、某些病毒和支原体感染、癌症、白血病、妊娠等都可以出现冷凝集反应[5]。

该实验中,20例标本在普通室温(20 ℃),37 ℃水浴30 min和25 ℃条件下37 ℃水浴30 min 3种条件测定时,WBC﹑PLT﹑HGB的计数结果差异无统计意义(P>0.05)。在研究中发现,当标本出现冷凝集时,数个红细胞凝集在一起,血细胞分析仪只对体积相当的红细胞或小红细胞进行了分析,而大红细胞团块完全被忽略,这就导致了不合逻辑的红细胞计数降低和高MCV。而HGB是红细胞溶解后采用比色方法测定,故冷凝集对HGB无影响。对于由RBC、HGB、HCT计算的参数MCV、MCH、MCHC则造成假性偏高。很多文献[6-7]报道了标本发生冷凝集时的处理方法,如经37 ℃水浴不同时间后立即进行检测,进行血浆置换,重新采血后立即测定。37 ℃水浴后在不同的仪器上检测。对试剂和样本进行双重加温,这些方法使冷凝集的标本得到了很好地处理。在本实验中,37 ℃水浴30 min纠正了15例冷凝集标本,但仍存在5例标本出现冷凝集现象。而在水浴的同时提高室内温度到25 ℃,对于5例冷凝集素效价高﹑红细胞聚集程度强的标本得到了很好地处理。从表中可以看出,20例标本在37 ℃水浴30 min和25 ℃条件下37 ℃水浴30 min两种条件检测时,红细胞、红细胞压积(HCT)、平均红细胞体积(MCV)、平均红细胞血红蛋白含量(MCH)、平均红细胞血红蛋白浓度(MCHC)的差异有统计学意义(P<0.05)。这与石恩荣在冷凝集对血液分析仪检测结果的影响的报道是一致的。在该实验中WBC、HGB、PLT差异无统计学意义(P>0.05)。由于XE-5000是以半导体激光器流式细胞技术结合荧光染色技术检测白细胞,故对WBC没有影响。冷凝集对PLT的影响报道并不一致,该实验显示PLT计数未受影响。在冷凝集的标本检测中,重新采血不但增加了患者的压力,而且病房标本立即检测很难做到。进行血浆置换可造成血小板和白细胞的丢失,置换次数越多丢失现象越严重。这可能与吸弃血浆时WBC﹑PLT被一起吸掉有关。在该实验中,水浴的同时升高温度避免了让患者重新采血的压力,避免了血浆置换WBC﹑PLT的丢失,且操作简单,对冷凝集的处理效果较好。一般的实验室很容易做到。

综上所述当遇到疑似冷凝集标本,如RBC,HGB比例严重不符时(正常人HGB和RBC的比例为30∶1),首先观察试管内标本状态,仔细观察红细胞分布的直方图和出现的报警信息,同时检测冷凝素的效价。当标本确定为冷凝集后,37 ℃水浴30 min后,可以利用空调提高室内的温度到25 ℃以上,此方法可以消除冷凝集素的影响。在日常工作中,尤其是冬天温度较低的时候,经常会遇到标本发生冷凝集情况。正确识别和处理冷凝集标本的异常检测结果,对临床准确评估患者的病情非常重要。可避免发出错误的检验报告,影响临床检验治疗

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参考文献

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[3] 林军,单卫民,赵胜.冷凝集素综合征引起配血困难一例分析[J].临床检验杂志,2000,18(2):112.

[4] 齐顺贞,杨宗城,何保斌,等.吸入一氧化氮对犬烟雾吸入性损伤血液流变学的影响[J].现代诊断与治疗,2006,9(3):148.

[5] 丛玉隆,王淑娟.今日临床检验学[M].北京:中国科学技术出版社,1997:40-41.

[6] 徐健,周到银,俞靖龙,等.冷凝集对血常规检测的影响及处理方案探讨[J].现代检验医学杂志,2011,26(6):105-108.

[7] 杨宏霞,江政松,焦连亭.一例红细胞冷凝集在2台血液分析仪上检验结果的分析[J].检验医学,2012,27(1):75-76.

(收稿日期:2014-06-11)

浏览次数:  更新时间:2015-09-16 17:00:47
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